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Introducción

Los cítricos son cultivados en un gran número de países dentro de una amplia región geográfica (Naqvi, 2004), cuya creciente y dinámica tendencia de producción permite afirmar que constituyen los frutales más extensivamente producidos en el mundo (Zhong y Nicolosi, 2020) con un área cosechada que en el año 2020 ascendió a 8.607.004 ha y una producción de 144.755.629 t (FAO, 2022). Zhong y Nicolosi (2020) señalaron que entre los principales países productores de cítricos resaltan China, Brasil y Estados Unidos, con naranjas (Citrus sinensis L. Osbeck), mandarinas (C. reticulata Blanco y C. unshiu Marc.), toronjas (C. paradisi Macfadyen), limones (C. limon L. Burmann f.), y limas (C. aurantifolia Christm. Swingle) como los cinco grupos de cítricos de mayor importancia económica.

La producción de estos importantes frutales puede verse afectada por plagas y enfermedades tanto en precosecha (Naqvi, 2004; Zhao et al., 2015), como en poscosecha (Hanif y Ashari, 2021), lo que conlleva a que parte de la producción se transforme en pérdidas y desperdicios, que generalmente en frutas y verduras ocurre en cinco etapas claves de la cadena de suministro de alimentos: producción agrícola, manipulación y almacenamiento poscosecha, procesamiento, distribución y consumo (Ron et al., 2018). Cuando los frutos se cosechan, estos presentan cambios relacionados con el fenómeno de la senescencia, y se caracterizan por pérdidas en el contenido de clorofila que son responsables del color verde de los cítricos, además de una elevada transpiración que conduce al marchitamiento, reacciones de fermentación (producción de etanol), pérdidas de valor nutricional y sensibilidad al ataque de microorganismos causantes de pudriciones (Muñoz, 2011).

En países desarrollados, las pérdidas por manejo poscosecha se consideran entre 5 y 10%, mientras que en países en desarrollo se incrementan entre 25 y 34% (Sonkar et al., 2008; Hanif y Ashari, 2021). Dentro de las principales causas de pérdidas, se incluyen la descomposición patológica, así como las pérdidas parciales por respiración o transpiración, que son consecuencia de la manipulación brusca de frutos durante la cosecha o el transporte inadecuado (Ashebre, 2015). Aunque ha existido un aumento en la producción de cítricos, las pérdidas económicas ocasionadas por las enfermedades de poscosecha representan actualmente uno de los principales problemas en la fruticultura mundial (Murray et al., 2019). En el caso de la pérdida de frutos en poscosecha, la descomposición por causa de patógenos es total.

Entre los principales patógenos asociados a cítricos, se mencionan a Penicillium digitatum (Pers.) Sacc., y a P. italicum Wehmer, como causantes de la podredumbre verde y azul, respectivamente (Naqvi, 2004; Ballester, 2007; Iqbal et al., 2017). Adicionalmente, las inadecuadas técnicas y escasas metodologías de manejo de enfermedades poscosecha alteran las propiedades de los cítricos, permitiendo que hongos como, Alternaria citri Ellis & N. Pierce, A. alternata (Fr.) Keissl., Botrytis cinerea Whetzel, Colletotrichum gloesporioides (Penz.) Penz. y Sacc., Geotrichum candidum Link, Rhizopus stolonifer Vuillemin, R. oryzae Went & H.C. Prinsen Geerligs, Phytophthora citrophthora (R.E. Sm. & E.H. Sm.) Leonian, colonicen, desarrollen y se diseminen dentro y fuera de los frutos (Tuset, 2015). Por lo tanto, la incidencia de las podredumbres depende de una combinación de factores, tales como, las características intrínsecas del fruto, entre ellas los compuestos volátiles (Droby et al., 2008; Wang et al., 2012) y el manejo durante la recolección y posterior manipulación poscosecha.

En el caso de los cítricos, la principal estrategia para el control de hongos es la aplicación de fungicidas órgano-sintéticos, como ortofenilfenato sódico, tiabendazol, imazalil o guazantina (Kanetis et al., 2008; Ritenour et al., 2022). No obstante, el uso continuado de este tipo de fungicidas presenta varias limitaciones importantes, como la aparición de cepas resistentes (Boubaker et al., 2009; Erasmus et al., 2015), las restricciones regulatorias sobre la aceptación de residuos en países importadores de cítricos y el posible efecto perjudicial de estos compuestos sobre la salud y el ambiente (Jurak et al., 2021).

Otro procedimiento utilizado para prolongar la vida de los frutos cítricos una vez cosechados, es el almacenamiento refrigerado, previo a un preenfriamiento de los frutos, favoreciendo la permanencia por más días en almacenamiento a temperaturas de 6 ± 0,5 °C (Genovese et al., 2020). El flujo de aire caliente, constituye otra alternativa, la cual, permite una máxima prevención de la pérdida de biomasa y previene la descomposición del frut0 (Wan et al., 2020).

En Ecuador, las pérdidas por manejo poscosecha están alrededor del 50% (Valarezo, 2014), y es poca la información disponible de estudios que detallen técnicas de este tipo de manejo. Entonces es importante realizar un compilado de las técnicas existentes para ofrecer al citricultor de Ecuador alternativas de manejo posterior a la cosecha. Expresada la problemática, la presente investigación tuvo como objetivo recopilar información sistémica, aplicativa y de gran utilidad sobre técnicas de manejo de enfermedades poscosecha en frutos de cítricos (Citrus spp.) en Ecuador.

Metodología

Para la elaboración del artículo de revisión, se usaron las bases de datos Springer, Scielo, Latindex, Dialnet, Google Académico donde se buscó trabajos de investigación colocando palabras claves como criterio de revisión: poscosecha, enfermedad, cítricos, cosecha, producción, P. digitatum, P. italicum, fungicida, almacenamiento, frío, calor, manejo poscosecha de cítricos, microorganismos antagonistas, Pseudomonas, Trichoderma, levaduras, bioquímicos, aceites esenciales, fungicida botánico, bioinsecticidas, Ecuador.

Desarrollo

Enfermedades poscosecha

Los cítricos, presentan enfermedades causadas por patógenos desde la floración hasta la cosecha y posteriormente por patógenos poscosecha que afectan la producción del cultivo y deterioran considerablemente la calidad del fruto (Naqvi, 2004); existen enfermedades precosecha, causadas por patógenos que infectan el fruto, pero que, por causas diversas, permanecen latentes o inactivas hasta después de la recolección y el almacenamiento (Brown, sf.; Naqvi, 2004). Este es el caso de la pudrición negra, reportada inicialmente en naranjo, pero actualmente afecta a la mayoría de los cítricos (Pierce, 1902; Umer et al., 2021), cuyo agente causal es Alternaria (Pierce, 1902).

Peever et al. (2005) indicaron que el hongo asociado a la mancha negra fue A. alternata. Las infecciones de este patógeno fueron latentes principalmente en las ramas y también en las flores (El-Otmani et al., 2011; Camiletti et al., 2022). Este patógeno ingresa por el pedúnculo del fruto, afectando los sacos de pulpa (endocarpio) y posteriormente la cáscara (exocarpio o epicarpio; Pierce, 1902). El-Otmani et al. (2011) indicaron que la enfermedad de la mancha marrón, que infectó la superficie del fruto, fue causada por A. alternata.

Otras enfermedades precosecha, incluyendo sus agentes causales fueron la pudrición gris (B. cinerea), la marrón (P. citrophthora), las pedunculares (Diplodia natalensis P. Evans y Phomopsis citri Fawcett), la antracnosis (C. gloeosporioides), entre otras, cuya incidencia fue menor y únicamente pueden resultar importantes en ciclos de producción, zonas o condiciones concretas (Zhao et al., 2015; Saito, 2017).

Las enfermedades poscosecha en los cítricos, pueden iniciarse por la infección del fruto durante la fase de crecimiento; otras enfermedades se originan en lesiones que se crean durante la cosecha y posterior manipulación del fruto (Eckert, 1978). Todas fueron consideradas enfermedades de poscosecha debido a que independientemente del momento en que puedan iniciar la infección del fruto, evitaron su llegada en buenas condiciones al destino final que fue el consumidor (Fallik, 2021).

Los principales agentes patógenos que causaron enfermedades poscosecha en cítricos, fueron: P. digitatum (Pers. Fr.) Sacc, P. italicum, y Geotrichum citri-aurantii Butler, podredumbre ácida (Mercier y Smilanick, 2005), aunque fue poco común su presencia puede causar grandes pérdidas en época de lluvia (Mercier y Smilanick, 2005; Wang et al., 2018). Phyllosticta citricarpa (teleomorfo: Guignardia citricarpa), es un hongo ascomiceto, agente causal de la mancha negra de los cítricos, que infecta a casi todas las especies económicamente importantes, causando graves pérdidas económicas en la producción de África, Asia, Australia y América del Sur (EFSA, 2014).

Aunque existen algunas enfermedades poscosechas, las causadas por P. digitatum y P. italicum, fueron las más comunes y destructivas (Ecker, 1989), debido a la reproducción masiva de esporas asexuales, que contribuyen a la epidemia del moho (Wang et al., 2014). Existen varios factores que favorecen la infección del fruto como: heridas en la corteza, un avanzado estado de maduración y condiciones ambientales adecuadas para el crecimiento del hongo (temperatura de 24 °C y humedad del aire en 80%) (EFSA, 2014).

Penicillium digitatum pertenece al Reino: Fungi, División: Ascomycota, Clase: Eurotiomycetes, Orden: Eurotiales, Familia: Trichocomaceae (Palou, 2014). Este hongo muestra un rango de hospedantes notablemente limitado, pudiendo infectar principalmente frutos maduros pertenecientes a la familia Rutaceae (Henrique et al., 2019). Las esporas de P. digitatum pueden activarse rápidamente y comenzar la colonización después de entrar en contacto con las heridas de los cítricos. En frutos de naranjo, la incidencia de pudrición puede llegar a 80% en 48 h y el 100% a las 60 h (Qian et al., 2019). Luego de la activación de las esporas, el desarrollo fúngico adicional, como la germinación de las esporas, el crecimiento de los tubos germinales, la formación de conidióforos, fiálidas y nuevos conidios, se completan en dos días, a partir de este momento, las heridas de los cítricos también se pudrirán (Wang et al., 2014; Qian et al., 2019).

Mediante y luego de la infección, los genes asociados con factores patogénicos, como las enzimas que degradan la pared celular, el etileno, los ácidos orgánicos y los efectores, fueron significativamente regulados o expresados en el ADN del patógeno (Yang et al., 2019). A esto se suma la capacidad de P. digitatum para enfrentar la producción de peróxido de hidrógeno por parte del huésped, debido al aumento de la producción de catalasa (Henrique et al., 2019).

En el caso de P. italicum, al igual que P. digitatum, pertenece al Reino: Fungi, División: Ascomitoca, Clase: Eurotiomycetes, Orden: Eurotiales, Familia: Trichocomaceae. Este hongo, a diferencia de P. digitatum, presenta otros huéspedes, enumerados en la base de datos de hongos del USDA-ARS, incluyendo aguacate, mango, camote, caqui, melón, tomate, Prunus spp., Pyrus spp., trigo y uva (Farr y Rossman, 2013). Presenta conidióforos que se originan en el sustrato u ocasionalmente en hifas superficiales y son terverticilados, hialinos, generalmente con las ramas adpresas, con estípites y métulas de 100-250 × 3,5-5,0 μm más o menos cilíndricos, de paredes lisas, con tres a seis fiálides cada uno (Palou, 2014).

En cuanto a la infección en citricos, los principales factores de virulencia y colonización conocidos en esta interacción fitopatológica fueron promovidos por las enzimas hidrolíticas poligalacturonasas (PG) producidas por P. italicum que provocaron maceración de tejidos o pudrición de frutos. Estas enzimas funcionaron mejor a pH más bajos y, dado que P. italicum fue capaz de acidificar el ambiente con la acumulación de ácidos orgánicos, especialmente ácido cítrico, la actividad de estas enzimas se ve favorecida durante la infección (Prusky et al., 2004). Otro mecanismo de la infección por P. italicum es la regulación a la baja de las expresiones génicas de la glicoproteína rica en hidroxiprolina (HRGP) y la proteína similar a la germinación (GLP), que están relacionadas con la pared celular del fruto (Li et al., 2019).

A nivel transcripcional, P. italicum induce la modificación de la pared celular al aumentar la expresión de los genes XTH21, XTH29, XTH33 y Expansin-A16, que contribuyen a la degradación de la pared celular. Aunque existe un aumento en la producción de lignina, que está relacionado con un mecanismo de defensa de los cítricos, la infección del fruto por P. italicum es exitosa (Li et al., 2019).

Técnicas químicas de manejo de enfermedades poscosecha de cítricos

Entre las técnicas químicas para el control de las enfermedades poscosecha en cítricos, los fungicidas sintéticos son los más usados (Wang et al., 2018; Ladino, 2020). Entre los fungicidas más utilizados en poscosecha de cítricos se encuentran el imazalil (IMZ), el tiabendazol (TBZ), el ortofenilfenato sódico (SOPP) todos ellos con una eficacia media o alta contra Penicillium spp. La guazatina, eficaz contra G. citri-aurantii, y el fosetil-Al, eficaz contra P. citrophthora (Camarasa, 2012; Pássaro et al., 2012; D`Aquino et al., 2013; Erasmus et al., 2015).

El imazalil, se ha evaluado en limón Meyer, con aplicación por aspersión e inmersión, obteniéndose mayor porcentaje de inhibición de crecimiento al cuarto y octavo día, siendo la mejor dosis 0,5 g·L-1 del tratamiento químico (Ladino, 2020). En naranja Valencia, inoculada con P. digitatum y tratada con el fungicida imazalil en dosis de 1500 mg·L-1, se redujo la incidencia de la pudrición a menos del 15%, siendo más efectivo en el biotipo sensible (Lado et al., 2011). Erasmus et al. (2105), usando naranja Valencia y tratamiento curativo y preventivo con varios fungicidas, encontraron que el imazalil tuvo un control y acción de protección de alrededor del 90% en cepa sensible, mientras que, en cepas resistentes y altamente resistentes, la efectividad fue baja.

Entre los fungicidas usados, orto-fenil-fenol sódico y el pirimetanil controlan mejor a los aislados resistentes, mientras que su uso con acción preventiva, solo el pirimetanil tuvo un efecto de 50% en cepas resistentes y altamente resistentes. Se han determinado alternativas para mejorar el control y evitar la resistencia, entre éstas, específicamente la rotación con otras moléculas químicas como el pirimetanil (PYR) o fludioxonil (FLU) y a su vez en combinación con sales como el sorbato potásico (SP) y el bicarbonato sódico (BCS) que resultaron efectivos al reducir la incidencia y el porcentaje de frutos con esporulación en aislados resistentes al IMZ sin afectar a la calidad y biomasa del fruto (Lado et al., 2011). Al ser un fungicida de uso frecuente, actualmente hay cepas resistentes al fungicida, y al evaluar en ellas la efectividad del producto, este fue bajo (Lado et al., 2011; D`Aquino et al., 2013; Lado et al., 2013).

El uso de insecticidas bioquímicos, a base de aceites esenciales es trascendental (Velásquez et al., 2014; Ladino, 2020), su efectividad en la inhibición del crecimiento de los patógenos varía de acuerdo al aceite, la dosis utilizada y la especie del cítrico (Yahyazadeh et al., 2009). Entre los aceites esenciales estudiados como alternativas de control de P. digitatum y P. italicum, se encuentra el aceite de mandarina, y las sustancias activas Carvacrol y Timol, obtenidos de orégano y tomillo, que a nivel in vitro inhibieron el crecimiento de los hongos y la esporulación entre un 50 y 100%. Entre los hongos evaluados, el más susceptible fue P. digitatum (Velásquez et al., 2014). Según estudios in vitro realizado por González (2013), los aceites de canela y clavo de olor en dosis de 500 µL en 1 L de medio de cultivo PDA, presentaron un 100% de inhibición del crecimiento de P. digitatum y P. italicum.

Otros componentes, son los péptidos microbianos y se usan como antibióticos (Jenssen et al., 2006), y se reportan excelentes resultados (Wang et al., 2018), al igual que las sales orgánicas e inorgánicas (Youssef et al., 2012). En el caso de su uso en cítricos, Wang et al. (2018) usaron el péptido cecropina para inhibir el crecimiento de los patógenos, encontrando que en concentraciones de 8 µmol·L-1, los hongos P. digitatum, P. italicum y G. candidum no crecieron. En el caso de los péptidos, en especial, el PAF, un hexapéptido, el cual no induce resistencia en los cítricos, más bien daña la membrana de micelio y esporas (Wang et al., 2021).

Técnicas biológicas en el manejo de enfermedades poscosecha de cítricos

En los cítricos se han descrito más de 20 tipos diferentes de enfermedades poscosecha, que han sido la principal causa de deterioro del fruto y provocaron pérdidas económicas (Chen et al., 2019). Las principales enfermedades patológicas en poscosecha de cítricos, fueron causadas principalmente por hongos (Eckert, 1978), los cuales, produjeron micotoxinas, entre las que se incluyeron agentes potencialmente cancerígenos como la citrinina y la patulina (Frisvad 2018; Dukare et al., 2019), así como compuestos termogénicos, como las triptoquivalinas (Ariza et al., 2002) por lo que representan una amenaza para la salud (Dukare et al., 2019).

Los hongos patógenos en poscosecha de cítricos interactúan con otros microorganismos (Visintin et al., 2010), y en atención a las interacciones positivas y negativas, que puedan ocurrir, se buscan microorganismos que puedan ser usados en el manejo de enfermedades fúngicas poscosecha (Visintin et al., 2010; Hao et al., 2011), debido a que los microorganismos son una de las principales fuentes de productos naturales con actividades biológicas útiles, es decir, antifúngicos potenciales, antibióticos, agentes anticancerígenos, tensioactivos (Demain, 2014). Entre los microorganismos estudiados como alternativa de control de las enfermedades, están los hongos, bacterias y levaduras (Hao et al., 2011; Luo et al., 2012; Lu et al., 2013; Pu et al., 2014; Toffano et al., 2017).

Algunos microorganismos, entre ellos, las levaduras presentaron acción preventiva en la infección de P. digitatum y P. italicum, y estimularon los mecanismos de defensa de los cítricos. Entre ellas, las levaduras Cryptococus laurentii ((Kufferath) Skinner), y Rhodosporidium paludigenums (Fell & Tallman), que pueden reducir la incidencia de la enfermedad hasta un 15%, y el tamaño de la lesión no superó los 3 mm (Lu et al., 2013). Rhodosporidium paludigenums aumentó los mecanismos de defensa de los frutos de cítricos, entre ellas algunas enzimas como: ß1,3-glucanasa, fenilalanina amoniaco-liasa, peroxidasa y polifenoloxidasa (Lu et al., 2013). Otra levadura con potencial biocontrol para P. digitatum, es Clavispora lusitaniae 146, que en concentraciones de 2 al 5% la eficiencia de protección puede llegar al 100%, además la protección mejora a mayores tiempos de incubación y concentraciones de esporas 5,19 × 108, 2,66 × 109, and 1,33 × 1010 CFU·mL-1 (Díaz et al., 2020). Luo et al. (2012) examinaron la capacidad de biocontrol de la levadura Pichia membranifaciens (E.C. Hansen), para controlar P. italicum y P. digitatum durante el almacenamiento, notando una menor incidencia de enfermedades en frutos cítricos sumergidos en 1 × 108 CFU·mL-1 de P. membranifaciens, además, en los frutos sumergidos o inoculados con P. membranafaciens aumentaron el contenido de compuestos fenólicos y flavonoides, peroxidasa (POD), polifenoloxidasa (PPO), actividades de fenilalanina amoniaco-liasa (PAL), quitinasa (CHI) y ß1,3-glucanasa en la cáscara de cítricos, las cuales se correlacionaron con el inicio de la resistencia inducida.

Pu et al. (2014) utilizaron la levadura Kloeckera apiculata cepa 34-9 para el control biológico; en atención que en estudios anteriores demostraron que K. apiculata produjo alcohol aromático feniletanol, y su investigación encontraron que K. apiculata se adhería y formaba un biofilm en la superficie de los cítricos, lo que constituyó una barrera mecánica interpuesta entre la superficie de la herida y el patógeno. Toffano et al. (2017) evaluaron la efectividad de los COVs producidos por Saccharomyces cerevisiae para controlar el hongo filamentoso Phyllosticta citricarpa; e informaron que P. citricarpa expuesto a la mezcla sintética de estos COVs, afectó negativamente al fitopatógeno.

Panebianco et al. (2015) descubrieron que la cepa 34-9 de K. apiculata, es una levadura antagonista con actividad de control biológico contra las enfermedades poscosechas de los cítricos. La cepa CMAA-1112 de la levadura Candida membranifaciens redujola severidad de enfermedad a través de la inducción de resistencia en el fruto (Terao et al., 2017). Por otra parte, Guedez et al. (2010) indicaron que Trichoderma spp. presentó actividad de control biológico contra P. digitatum, quienes también usaron quitosano y bicarbonato.

Visintin et al. (2010) obtuvieron microorganismos bioactivos de la microflora epifita de frutos recolectados de huertos con un manejo integral de enfermedades y buenas condiciones sanitarias, obteniendo 20 aislamientos bacterianos y 18 levaduras. El porcentaje de la microflora bioactiva varió de acuerdo al fruto cítrico, toronja (Citrus grandis (L.) Osbeck), mayormente levaduras (71%). De pomelo (C. paradisi Macfadyen), obtuvieron 50% de bacterias y 50% de levaduras, mientras que en naranjas (C. sinensis (L.) Osbeck) y mandarinas (C. reticulata Blanco) predominaron las bacterias. Las cepas nativas que aislaron y evaluaron para el control de P. digitatum, presentaron efecto de antibiosis.

Especies de bacterias del género Bacillus han sido reportadas como inhibidores del crecimiento de una serie de patógenos vegetales a través de antagonismo, cuyo modo de acción fue la competencia por los nutrientes o el espacio, aunque no se puede excluir la interacción directa (Hong et al., 2014). Abraham et al. (2010) demostraron que las cepas de B. subtilis (Ehrenberg Cohn) tuvieron típicamente la capacidad de sobrevivir en superficies de limones y algunas fueron antagónicas a patógenos.

Hao et al. (2011) mencionaron que la cepa HF-01 de la bacteria B. amyloliquefaciens puede ser aislada de las superficies de cítricos, mandarina, caracterizándose por su actividad antifúngica, y por el hecho de ser un antagonista efectivo de los principales patógenos poscosecha. Otras bacterias como Pseudomonas spp., presentan actividad de biocontrol contra P. digitatum en limones y naranjas (Panebianco et al., 2015). Por otro lado, Luo et al. (2012) trabajando con la levadura biocontrol Pichia membranifaciens demostraron que controlaron diversas enfermedades fúngicas poscosechas de diferentes frutos en cítricos.

Técnicas poscosecha de origen físico

Pássaro et al. (2012) indicaron que la conservación a temperaturas bajas (3-5 ºC para naranjas y mandarinas y 10-14 ºC para limas, limones y pomelos, siempre con un 90-98% HR) fue un sistema físico complementario a otros tratamientos antifúngicos. Sin embargo, el almacenamiento a bajas temperaturas, puede afectar la calidad del fruto, el cual varía en función de la especie y las variedades de la especie (Ghasemnezhad et al., 2008; Balaguera y Palacios, 2018). El almacenamiento en estas condiciones no ejerció por sí mismo una actividad fungicida, pero sí una acción fungistática de inhibición o retraso del crecimiento de los patógenos. Por otro lado, ralentizó la actividad metabólica del fruto y retrasó la senescencia, ayudando así a mantener la resistencia natural del fruto a la infección (Pássaro et al., 2012).

Los principales tratamientos físicos antifúngicos se basaron en la aplicación de calor, ya sea mediante aire o agua caliente (Palou 2013). Los tratamientos más convencionales de curado en cítricos consistieron en la exposición de los frutos a temperaturas superiores a 30 ºC y HR superiores al 90% durante 1-3 días. En relación a la influencia de temperatura, a 25 °C, P. digitatum y P. italicum alcanzaron el 100% de esporas germinadas dentro de las 15 h posteriores a la inoculación, mientras que su germinación se retrasó y disminuyó cuando la temperatura decayó a 10 y 4 °C o sobrepasó los 37 °C (Plaza et al., 2003).

Nunes et al. (2007) verificaron que el curado a 40 ºC durante 18 horas permitió reducción total de la podredumbre verde y azul en naranja Valencia de diferentes orígenes y conservadas a 5 ºC durante 5 días seguidas de 20 ºC durante 7 días; asimismo, observaron que este curado no afectó negativamente la calidad de las naranjas (Nunes, 2007). Otro tratamiento gaseoso ensayado es la fumigación de cítricos con amoníaco (Montesinos-Herrero, 2011). La aplicación de 3.000 ppm de amoníaco a 22 ºC durante 6 horas controló satisfactoriamente la podredumbre verde en naranjas y limones. Además, este sistema de control se mostró sinérgico con la aplicación de IMZ a dosis muy bajas.

Conclusiones

Las nuevas tecnologías que se investigan para el manejo de enfermedades poscosecha, entre ellas el uso de bioquímicos, biológicos y físicos son excelentes alternativas de manejo de las enfermedades poscosecha. Sin embargo, el uso de una sola medida no es suficiente, siendo necesario la aplicación de al menos dos medidas de manejo. Estos métodos de control enfatizan la prevención de enfermedades; no obstante, cada método utilizado reduce el porcentaje de daño en cierta cantidad, por lo que la combinación de los mismos resultaría una combinación eficaz, ciertamente esta alternativa debería evaluarse a profundidad para evitar daños posteriores en la calidad del fruto y la salud.

Conflicto de intereses

Los autores declaran no tener conflictos de interés en la presente publicación en ninguna de sus fases.

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Autores	Contribución
Cristhian Jesús Chávez Caicedo	Propuesta de tema y búsqueda de artículos relacionados a la temática, escritura de referencia.
Jessenia Rosanna Castro Olaya	Propuesta de tema y búsqueda de artículos relacionados a la temática, análisis de la información recopilada, revisión del documento e incorporación de información.
Adriana del Carmen Celi Soto	Revisión del documento e incorporación de información y referencias bibliográficas.
Dorys Terezhina Chirinos Torres	Revisión del documento e incorporación de información y referencias bibliográficas.