Influencia del sistema de cultivo en los índices fagocíticos y ganancia de peso del bagre (Rhamdia quelen, Quoy & Gaimard, 1824)

Authors

  • Renata Stecca Iunes Universidade de São Paulo- USP
  • André Luiz Veiga Conrado Universidade de São Paulo - USP
  • Isabella Cristina Bordon
  • Matheus Santos Costa Universidade de São Paulo - USP
  • José Roberto Machado Cunha da Silva

DOI:

https://doi.org/10.33936/at.v5i1.5268

Keywords:

Phagocytic indexes, Aquaponic, Heterotrophic, Watercress, Rhamdia quelen, Índices fagocíticos, Acuaponia, Biofloc, Berro

Abstract

El consumo de pescado ha estado creciendo desde 1961. De hecho, el sector pesquero es esencial para prevenir el hambre y la desnutrición. Sin embargo, este sector tiene sus desafíos. Las poblaciones de peces se están agotando más allá de la sostenibilidad biológica, con enfermedades y riesgos de bioseguridad para la producción y daños al medio ambiente y los ecosistemas. Existe una clara necesidad de mejorar la piscicultura con la mínima ocupación e impacto ambiental. Los sistemas biofloc y acuapónicos se están utilizando y modificando para abordar estas necesidades. Sin embargo, los factores ambientales pueden afectar la inmunidad innata de los peces criados en estos sistemas. Comprender cómo estos sistemas afectan la inmunidad de los peces es fundamental para prevenir posibles peligros y fallas en estos métodos de producción. El objetivo de esta investigación fue evaluar el rendimiento, crecimiento e índices fagocíticos de juveniles de bagre (Rhamdia quelen) criados en sistemas de recirculación de agua, biofloc y acuaponía en consorcio con plántulas de berro (Nasturtium officinale). En cada sistema, 12 juveniles con un peso de 15,2 g±7,6 se dividieron aleatoriamente en tres repeticiones, alimentados con alimento comercial. Diariamente se evaluaron los siguientes parámetros físico-químicos: temperatura, amoníaco total y tóxico, nitrito y pH del agua. Los peces se pesaron mensualmente durante seis meses. Se observó que los juveniles de R. quelen criados en el sistema acuapónico alcanzaron un mayor peso promedio, pero no se detectó significancia estadística (p>0.05) en comparación con los criados en los sistemas de recirculación y biofloc. Al final del experimento, el índice fagocítico fue menor solo en el sistema de recirculación. La capacidad fagocítica fue menor en todos los sistemas. Aunque el sistema acuapónico presentó una baja ganancia de peso promedio/animal, el desempeño de este sistema fue efectivo en la reducción de las concentraciones de amoníaco total y nitrito en el agua, en consorcio con la producción de hortalizas.

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References

Afonso A., Ellis A, E., Silva M. T. (1997). The Leucocyte Population of the Unstimulated Peritoneal Cavity of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology, 7 (5): 335–348.

Araújo A. F. (2015). Integração de plantas com espécies nativas de peixes em sistema de aquaponia. Master dissertation. Universidade Federal de Santa Catarina, Florianópolis, Brazil.

Avnimelech Y. (2011). BIO-FLOCS TECHNOLOGY: Basics and New Developments. World Aquaculture. Natal, Brazil (june 2011). https://www.was.org/WASMeetings/meetings/SessionAbstracts.aspx?Code= WA2011&Session=39.

Baßmann B., Brenner M., Palm HW. (2017). Stress and welfare of African catfish (Clarias gariepinus Burchell, 1822) in a coupled aquaponic system. Water, 9: 504.

Baßmann B., Harbach H., Weißbach S., Palm HW. (2020). Effect of plant density in coupled aquaponics on the welfare status of African catfish, Clarias gariepinus. Journal of the World Aquaculture Society, 51:183-199.

Baldisserotto B., Radünz Neto J. (2004). Criação de Jundiá. Editora UFSM. Santa Maria, Brazil.

Blidariu F., Grozea A. (2011). Increasing the Economical Efficiency and Sustainability of Indoor Fish Farming by Means of Aquaponics - Review. Animal Science and Biotechnologies, 44:1–8.

Braun N, De Lima RL, Moraes B., Loro VL, Baldisserotto B. (2006). Survival, growth and biochemical parameters of silver catfish, Rhamdia quelen (Quoy & Gaimard, 1824), juveniles exposed to different dissolved oxygen levels. Aquaculture Research, 37:1524-1531.

Browdy, C.L., D. Bratvold, A.D. Stokes, and R.P McIntosh. (2001). Perspectives on the Application of Closed Shrimp Culture Systems.World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA, edited by C.L. Browdy and D.E. Jory, 20–30

Calone, R., Pennisi, G.; Morgenstern, R; Sanyé-Mengual, E.; Lorleberg, W.; Dapprich, P.; Winkler, P.; Orsini, F.; Gianquinto, G. (2019). Improving water management in European catfish recirculating aquaculture systems through catfish-lettuce aquaponics. Science of the Total Environment, 687:759-767.

Chippari-Gomes A.R, Gomes L.C, Baldisserotto B. (2000). Lethal temperatures for Rhamdia quelen larvae (Pimelodidae). Ciência Rural, 30(6):1069-1071.

Copatti, C.E.; García, L.O.; Cunha, M.A., Baldisserotto, B., Kochhann, D. (2011). Interaction of water hardness and pH on growth of silver catfish, Rhamdia quelen, juveniles. Journal of the World Aquaculture Society, 42:580-585.

Cunha da Silva J. R. M., Cooper E. L., Sinhorini I. L., Borges J. C. S., Jensch-Junior B. E., Porto-Neto L. R., Hernandez-Blazquez F. J., Vellutini B. C., Pressinotti L. N., Costa-Pinto F. A. (2005). Microscopical Study of Experimental Wound Healing in Notothenia Coriiceps (Cabeçuda) at 0 Degrees C. Cell and Tissue Research 321 (3): 401–410.

Da Rocha A., Biazzetti Filho M., Stech M., Paz da Silva R. (2017). Lettuce production in aquaponic and biofioc systems with silver catfish Rhamdia quelen. Boletim do Instituto de Pesca, 43:64-73.

FAO. (2006). FAO Fisheries Circular No. 1018.Use of fishery resources as feed inputs to aquaculture development: trends and policy implications. Water Resources, 1018:1-114.

FAO (2020). The State of World Fisheries and Aquaculture 2020. Sustainability in action. Rome.

Gomes L. D. C., Golombieski J.I., Chippari-Gomes A.R, Baldisserotto, B. (2000). Biologia do jundiá Rhamdia quelen (Teleostei, Pimelodidae). Ciência Rural, 30:179-185.

Graber A., Junge R. (2009). Aquaponic Systems: Nutrient recycling from fish wastewater by vegetable production. Desalination, 246:147–156.

IGFA. International Game Fish Association. (2001). Database of IGFA angling records until 2001. IGFA, Fort Lauderdale, USA.

Knaus U., Wenzel L. C., Appelbaum S., Palm H. W. (2020). Aquaponics (sl) Production of Spearmint (Mentha spicata) with African Catfish (Clarias gariepinus) in Northern Germany. Sustainability, 12: 8717.

Lima R. L. D., Braun N., Kochhann D., Lazzari, R. Radünz-Neto, J., Moraes, B. S., Loro, V.L., Baldisserotto, B. (2011). Survival, growth and metabolic parameters of silver catfish, Rhamdia quelen, juveniles exposed to different waterborne nitrite levels. Neotropical Ichthyology. 9:147-152.

Mansour, A. T., Esteban M. Á.. (2017). Effects of Carbon Sources and Plant Protein Levels in a Biofloc System on Growth Performance, and the Immune and Antioxidant Status of Nile Tilapia (Oreochromis Niloticus). Fish and Shellfish Immunology, 64: 202–209.

Miron D.D.S., Moraes B, Becker A.G., Crestani, M., Spanevello, R., Loro, V.L., Baldisserotto, B. (2008). Ammonia and pH effects on some metabolic parameters and gill histology of silver catfish, Rhamdia quelen (Heptapteridae). Aquaculture. 277:192-196.

Naylor, R. L., Goldburg R. J., Primavera J. H., Kautsky N., Beveridge M. C., Clay J., Folke C., Lubchenco J., Mooney H., Troell M. (2000). Effect of Aquaculture on World Fish Supplies. Nature, 405 (6790): 1017–1024.

Oladimeji S.A., et al. (2020). Aquaponics production of catfish and pumpkin: Comparison with conventional production systems. Food Science & Nutrition, 8: 2307-2315.

Osman A.G.M, Farrag M.M.S., Badrey A.E.A., Khedr Z.M.A., Kloas W. (2021). Water quality and health status of the monosex Nile Tilapia, Oreochromis niloticus cultured in aquaponics system (ASTAF-PRO). Egyptian Journal of Aquatic Biology & Fisheries, 25(2): 785-802.

Pasch J., Ratajczak B., Appelbaum S., Palm H.W., Knaus U. (2021). Growth of Basil (Ocimum basilicum) in DRF, Raft, and Grow Pipes with Effluents of African Catfish (Clarias gariepinus) in Decoupled Aquaponics. AgriEngineering, 3:92-109.

Piedras S.R.N, Moraes P.R.R, Pouey J.L.O.F. (2004). Crescimento de juvenis de jundiá (Rhamdia quelen) de acordo com a temperatura da água. Boletim do Instituto de Pesca, 30:177- 182.

Poppola O.M., Oguntade S.T., Adebayo O.T. (2021). Growth performance and immunological response of African Catfish (Clarias gariepinus) juveniles reared in biofloc system. Journal of Agriculture and Rural Development in Tropics and Subtropics, 122(1): 137-145

Reverter M., Bontemps N., Lecchini D., Banaigs B., Sasal P.. (2014). Use of Plant Extracts in Fish Aquaculture as an Alternative to Chemotherapy: Current Status and Future Perspectives. Aquaculture, 433: 50–61.

Rosenfeld G. (1947). Método rápido de coloração de esfregaços de sangue. Noções práticas sobre corantes pancrônicos e estudos de diversos fatores. Memórias de Instituto Butantã, 20:315-328.

Santos, M.a J. P. L. Dos. (2016). Smart Cities and Urban Areas — Aquaponics as Innovative Urban Agriculture. Urban Forestry & Urban Greening, 20: 402–406.

Schryver P., Crab, R., Defoirdt, T., Boon, N., Verstraete, W. (2008). The basics of bio-flocs technology: The added value for aquaculture. Microbial Ecology, 277:125–137.

Zaniboni Filho E., Meurer S., Shibata O.A., de Oliveira Nuñer A.P. (2004). Catálogo ilustrado de peixes do alto Rio Uruguai. Florianópolis: Editora da UFSC. 128 p.

Published

2023-03-02

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